激光共聚焦显微镜 TruAI 图像分割功能如何自动识别细胞?
Evident 原奥林巴斯 FV4000 共聚焦,讲解 TruAI 深度学习图像分割识别细胞的原理、训练推理流程,对比传统阈值分割,介绍硬件协同效果以及实验使用注意事项。
在细胞生物学、神经科学、药物筛选实验中,细胞计数、轮廓提取、亚细胞结构统计、组织切片细胞分型是非常高频的分析工作。传统共聚焦图像分析大多依靠强度阈值分割,依靠像素荧光亮度区分细胞和背景。但当遇到荧光信号微弱、细胞紧密粘连、背景杂质干扰、组织自发荧光较强的样本时,简单阈值很容易出现漏识别、过度分割、把碎片误判为细胞等问题,后期需要投入大量人力手动修正轮廓,严重拖慢实验进度。Evident 原奥林巴斯 FV4000 激光共聚焦显微镜搭载的 TruAI 深度学习图像分割模块,依托 cellSens 软件深度神经网络,跳出单纯依赖荧光亮度的传统思路,可以实现细胞、细胞核、神经元、组织靶标结构的自动化识别与轮廓提取,大幅降低图像后处理的人工成本。很多使用者对 TruAI 的认知停留在 “自动圈细胞”,并不理解 AI 识别细胞背后的运行逻辑、完整工作流程,以及和 FV4000 硬件之间的协同关系。
传统阈值分割识别细胞的逻辑十分简单,设定一个亮度临界值,高于阈值的像素判定为细胞,低于阈值判定为背景。这套方法在染色均匀、细胞分散、信噪比高的理想样本中可以正常工作。可真实科研样本条件复杂,活细胞延时成像为降低光毒性会刻意压低激光功率,造成图像信号偏弱;脑组织、肿瘤组织切片存在大量自发荧光;高密度培养的细胞互相堆叠紧贴,细胞边界亮度差异很小。此时阈值要么漏掉弱信号细胞,要么把背景噪声划入细胞区域,粘连细胞无法自动拆分,很难得到可靠统计结果。而 TruAI 图像分割采用卷积神经网络,不只是读取单像素荧光强度,还会综合细胞形态、纹理、边缘特征、空间上下文信息综合做像素级别判断,以此区分真正细胞、细胞碎片、背景噪声、组织杂质,这也是它可以处理低信噪比复杂样本的核心原因。
TruAI 自动识别细胞完整分为两大阶段:模型训练阶段与推理分割阶段,想要 AI 准确识别目标细胞,训练是必不可少的前提环节。在训练阶段,研究者挑选一部分具有代表性的共聚焦图像,对图像里的目标细胞做人工标注,勾勒出细胞、细胞核或者神经元的真实轮廓,生成真实参考掩码。标注样本需要覆盖实验中会遇到的各类情况,包含强弱不同的荧光信号、不同细胞形态、细胞粘连场景、正常背景与杂质干扰。软件会将原始图像与标注掩码送入神经网络,网络不断迭代运算,对比自己预测出的细胞轮廓和人工标注真实轮廓之间的差异,持续调整网络参数,不断学习细胞的形态、边缘、灰度纹理特征,直到相似性指标达到合格水平,生成专属的训练完成模型。
训练完成之后进入推理识别阶段,将 FV4000 采集的全新原始图像导入,调用已经训练好的神经网络模型。神经网络逐像素扫描整张图像,判断每一个像素属于 “目标细胞” 还是 “背景”,输出概率图,概率越高代表该像素属于细胞的可能性越大。软件基于概率图自动生成完整细胞轮廓,自动拆分部分互相粘连的细胞,输出每一个识别到细胞的独立掩码。完成识别分割之后,软件就可以自动批量输出细胞数量、细胞面积、平均荧光强度、总荧光强度、圆度等各类定量参数,直接用于后续统计分析。这套模型可以保存复用,同一类实验的大批共聚焦图像可以直接批量处理,不用再一张一张手动圈选细胞。
TruAI 分割功能和 FV4000 硬件体系可以深度协同,进一步放大自动识别的效果。FV4000 搭载 SilVIR 高灵敏度探测器,即便是低激光功率下采集的弱荧光图像,也能保留有效细胞特征,给到 TruAI 足够的信息完成识别;搭配 1K 共振扫描模式开展活细胞长时间延时成像时,为控制光毒性往往使用较低激光剂量,图像信噪比会有所下降,传统阈值分割基本失效,而 TruAI 可以从低信噪比快扫图像中稳定识别细胞轮廓,实现长时间活细胞序列图像的全自动细胞追踪统计。同时 FV4000 的 TruSpectral 光谱成像完成光谱拆分之后,去除染料串扰、降低背景干扰,给到 TruAI 更加干净的单通道图像,进一步降低 AI 误判概率。除了荧光通道之外,TruAI 还支持对明场、相差图像开展细胞识别,部分场景下甚至不需要细胞核荧光染色,仅依靠明场图像就完成细胞核识别计数,省去染色步骤,减少染料对于活细胞生理状态带来的干扰。
TruAI 图像分割的适用场景十分丰富。细胞层面可以实现贴壁细胞、悬浮细胞、细胞球里面细胞核与细胞质识别统计;神经生物学方向可以识别脑组织切片当中神经元、阳性标记细胞,自动统计阳性细胞数量与表达水平;药物筛选实验中,批量识别药物处理组与对照组细胞,自动统计细胞表型变化;对于三维 Z‑stack 层扫共聚焦数据,TruAI 同样支持三维维度的细胞分割,识别三维空间内细胞结构,配合三维重构完成立体空间细胞定量。
但也要明确 TruAI 并不是开箱即用的万能工具,在实际使用中存在不少容易踩坑的误区。第一,不存在通用万能模型,针对自己的样本必须完成针对性训练,直接套用其他组织、其他细胞类型训练出来的模型,会出现大量识别错误。第二,标注样本的质量直接决定识别结果,如果标注图片数量过少,没有覆盖样本里细胞大小差异、强弱信号、杂质情况,训练出的模型泛化能力差,换到新图像就会大量漏检、误检。第三,AI 识别结果不能直接无条件采信,即便是训练效果很好的模型,实验中依旧需要抽取部分结果人工复核校验,尤其用于论文发表的定量数据,需要核对分割掩码,排查错误分割案例。第四,TruAI 不能弥补成像硬件缺陷,如果原始图像严重过曝、完全失焦、噪声淹没全部有效信号,无论 AI 算法如何强大,也无法凭空识别出细胞。
TruAI 图像分割功能自动识别细胞,本质是深度学习网络学习细胞多维图像特征,而非简单依靠像素亮度阈值,结合 FV4000 优异的成像硬件输出高质量原始图像,经过标注训练之后,实现大批量共聚焦图像的细胞自动识别、轮廓提取和定量输出。它不能完全取代研究者的判断,但可以把科研人员从重复枯燥的手动圈选细胞工作中解放出来,提升细胞计数、表型统计、药物筛选、组织切片分析的工作效率,让更多精力聚焦在生物学假设与结果解读上。
Evident原奥林巴斯显微镜:https://lifescience.evidentscientific.com.cn/zh/
激光共聚焦显微镜-fv4000:https://lifescience.evidentscientific.com.cn/zh/laser-scanning/fv4000/










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